Cytométrie en flux approfondie – niveau 3
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Description
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Typologie
Formation
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Lieu
Paris
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Heures de classe
35h
-
Dates de début
Dates au choix
Former théoriquement et pratiquement aux développements techniques récents utilisés en cytométrie de flux (marquages 2 à 10 couleurs) et intégration de cet outil dans des approches biotechnologiques complexes incluant tri magnétique et élutriation.Familiariser les participants avec différents appareillages de cytométrie en flux : cytomètres analyseurs FACS Canto II et FACScan (BD Biosciences) et cytomètre élutrieur MoFlow (Beckman Coulter).Familiariser les participants avec différents logiciels d’analyse de données de cytométrie en flux : CellQuest (BD Biosciences) sur postes d’analyse Macintosh ; FACS Diva (BD Biosciences), FlowJo (Tree Star), Win MDI (Logiciel Académique gratuit), FCAP et FCS filter (BD Biosciences) disponible sur plusieurs postes d’analyse PC.Intégrer les résultats obtenus et les synthétiser sous la forme d’une présentation orale.
Les sites et dates disponibles
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Date de début
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À propos de cette formation
Public et prérequisChercheurs, Enseignants-Chercheurs, Ingénieurs, Techniciens, Post-Doctorants, Doctorants et Personnels de santé exerçant dans le domaine des sciences du vivant, particulièrement dans le domaine de l’immunologie.Conditions d’accès et prérequis :Notions de base théoriques et/ou pratiques de cytométrie en flux ;Connaissance de l’immunologie (différentes populations lymphocytaires, notions sur les cellules présentatrices d’antigènes).
Les Avis
Les matières
- Stratégies
- Analyse de résultats
- Cytologie
- Immunologie
- Pathologie
- Physique
- Biologie
- Chimie
- Analyse
- Sciences
Le programme
- Rappels et approfondissements des notions de cytométrie en flux. Présentation des applications potentielles de la cytométrie en flux.
- Conception d’un plan expérimental et analytique :
- Stratégies de réglage des compensations manuelles et automatiques (2 à 10 couleurs).
- Stratégies de fenêtrage et contrôles de marquage.
- Stratégies analytiques.
- Analyse phénotypique polychromatique de sous-populations lymphocytaires T et de cellules dendritiques spléniques murines.
- Isolation de sous-populations de cellules dendritiques par tri magnétique suivi d’une élutriation par cytométrie en flux.
- Analyse d’exemples expérimentaux fournis par les participants
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